Эпидемиологическое значение окружающей домашней среды у больных муковисцидозом с хронической инфекцией легких, вызванной Pseudomonas aeruginosa.
Abstract
Для больных муковисцидозом (МВ) фактором риска является инфицирование дыхательных путей бактериями Pseudomonas aeruginosa, S. aureus, B.cepacia complex и другими представителями НГОБ. Недостаточная дезинфекция объектов внешней среды и предметов ухода за больными детьми, циркуляция возбудителей в окружающей домашней среде может приводить к повторному заражению и суперинфицированию. Целью работы являлось определение эпидемиологического значения окружающей домашней среды в инфицировании детей больных муковисцидозом бактериями P. aeruginosa и оценка эффективности профилактических мер в домашних условиях. Материалы и методы исследования. В ходе исследования проанализированы условия проживания 27 детей с хронической инфекцией легких, вызванной P. aeruginosa, страдающих МВ и их семей. Изучены 265 проб, взятых с объектов домашней внешней среды. Отбор проб с поверхностей осуществляли методом смывов. Исследование проводилось с помощью бактериологических и молекулярно-генетических методов. Результаты. Анализ анкет показал, что 26 % семей детей больных МВ не использовали моющие или дезинфицирующие средства для ухода за небулайзерами. 41% семей не выдерживали определенное время (режим) дезинфекции раковин. 83% раковин санузлов были контаминированы микроорганизмами. Среди выделенных микроорганизмов частота высева P. aeruginosa составила 20%. Мониторинг домашней среды показал, что основными резервуарами P. aeruginosa являлись сливы раковин, а также выявлена контаминация синегнойной палочкой масок небулайзеров и зубных щеток. Данные, полученные методом ПЦР при изучении изолятов P. aeruginosa, выделенных из разных объектов, указывают на возможность циркуляции одного генотипа в домашней среде. Исследования эффективности профилактических мер по дезинфекции небулайзеров и раковин показали, что они являются недостаточными. После проведения дезинфекции с поверхностей 22% небулайзеров высевали условно-патогенные микроорганизмы. С фильтров компрессоров небулайзеров и зубных щеток выделяли A. lwoffii, Aspergillus niger, Candida albicans и S. aureus, которые могут инфицировать легкие пациентов с МВ, в том числе в ассоциации с P. aeruginosa. Заключение. Обязательным для больных с муковисцидозом для достижения эрадикации возбудителей инфекции легких должен стать контроль за микробиологическими рисками в домашней среде, включающий регулярный мониторинг и строгие протоколы обработки ключевых объектов.
About the Authors
Екатерина СияноваRussian Federation
Марина Чернуха
Russian Federation
Лусине Аветисян
Russian Federation
Ольга Медведева
Russian Federation
Анна Воронкова
Russian Federation
Елена Кондратьева
Russian Federation
Егор Бурмистров
Russian Federation
Никита Поляков
Russian Federation
Андрей Соловьев
Russian Federation
Владимир Жуховицкий
Russian Federation
Елена Жекайте
Russian Federation
References
1. CYSTIC FIBROSIS. 2nd edition, revised and supplemented (edited by N. Yu. Kashirskaya, N. I. Kapranov, and E. I. Kondratyeva). Moscow: MEDPRAKTIKA-M Publishing House, 2021, 680 с. URL:http://www.medpractika.ru/books/new/ ?id=316
2. Avetisyan L.R., Chernukha M.Yu., Burmistrov E.M., Siyanova E.A., и соавт. Adaptation of Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa, Burkholderia cepacia complex, and Achromobacter spp. bacteria doring chronic lung infection in patients with cystic fibrosis.Bulletin of the Orenburg Scientific Center. 2023(2). – DOI: 10.24411/2304-9081-2023-12002
3. Shaginyan I.A., Avetisyan L.R., Chernukha M.Yu., Siyanova E.A., и соавт. Epidemiological significance of genome variations in Pseudomonas aeruginosa causing chronic lung infection in patients with cystic fibrosis.CMAC. 21 (4), 340-351. DOI: 10.36488/cmac.2019.4.340-351
4. Siyanova E.A., Chernuha M.Yu., Avetisyan L.R, и соавт. Monitoring of chronic lung infection in patients with cystic fibrosis caused by Pseudomonas аeruginosa. Pediatria n.a. G.N. Speransky. 2018; 97 (2): 77-86.URL: https://cyberleninka.ru/article/n/monitoring-hronicheskoy-infektsii-legkih-u-bolnyh-mukovistsidozom-vyzvannoy-bakteriyami-pseudomonas-aeruginosa
5. Медицинская микробиология/ Покровский В.И. – 4 е изд., стереот. – М.: ГЭОТАР Медиа, 2010. – 768 с.
6. Bergan T. Pathogenetic factors of Pseudomonas aeruginosa // Scandinavian journal of infectious diseases. – 1981. – V.29. – P.7-12.
7. Silva M. E., Filho I. C., Endo E.H., et аl. Characterisation of potential virulence markers in Pseudomonas aeruginosa isolated from drinking water // Antonie Van Leeuwenhoek. – 2008. – V.93. – №4. – P.323-34. doi: 10.1007/s10482-007-9209-8
8. Crone S., Vives-Flórez M., Kvich L., et al. (2020). The environmental occurrence of Pseudomonas aeruginosa // APMIS. – 2020. – V.128. – №3. – P.220–231. https://doi.org/10.1111/apm.13010
9. Воробьев А. А. Микробиология/ Воробьев А. А., Быков А. С., Пашков Е. П., Рыбакова А. М. – 2-е изд. – М.: Медицина, 2003. – 335 с.
10. Nesse L.L., Simm R. Biofilm: A hotspot for emerging bacterial genotypes. Chapter in a book: Advances in applied microbiology Academic Press, 2018. https://doi.org/10.1016/bs.aambs.2018.01.003
11. Moradali M.F., Ghods S., Rehm B.H. Pseudomonas aeruginosa Lifestyle: A Paradigm for Adaptation, Survival, and Persistence // Front. Cell Infect. Microbiol. 2017. – V. 7. – P. 39. doi: 10.3389/fcimb.2017.00039.
12. Boyle M., Ford T., Maki J.S., et al. Biofilms and the survival of opportunistic pathogens in recycled water // Waste Manag. Res. – 1991. – V.9. –P. 465-470. doi:10.1016/0734-242X(91)90077-K
13. Schelstraete P., Van Daele S., De Boeck K., et al. Pseudomonas aeruginosa in the home environment of newly infected cystic fibrosis patients // Eur Respir J. – 2008. – V. 31, №4. – P.822-829. doi: 10.1183/09031936.00088907
14. Regnath T., Kreutzberger M., Illing S., et аl. Prevalence of Pseudomonas aeruginosa in households of patients with cystic fibrosis // Int J Hyg Environ Health. – 2004. – V. 207, №6. – P.585-8. doi: 10.1078/1438-4639-00331.
15. Purdy-Gibson M.E., France M., Hundley T.C., et аl. Pseudomonas aeruginosa in CF and non-CF homes is found predominantly in drains // J Cyst Fibros. – 2015. – V. 14, №3. – P.341-6. doi: 10.1016/j.jcf.2014.10.008
16. Кондратенко О. В. Оценка влияния микрофлоры объектов окружающей среды на возможность внестационарной колонизации дыхательных путей пациентов с муковисцидозом // Ульяновский медико-биологический журнал. – 2018. – №4. – С.156-164. URL: https://cyberleninka.ru/article/n/otsenka-vliyaniya-mikroflory-obektov-okruzhayuschey-sredy-na-vozmozhnost-vnestatsionarnoy-kolonizatsii-dyhatelnyh-putey-patsientov-s (дата обращения: 16.01.2026).
17. Методические рекомендации. МУК 4.2.2942-11 Методы санитарно-бактериологических исследований объектов окружающей среды, воздуха и контроля стерильности в лечебных организациях.
18. Чернуха М.Ю., Аветисян Л.Р., Шагинян И.А., и соавт. Алгоритм микробиологической диагностики хронической инфекции лёгких у больных муковисцидозом // Клиническая микробиология и антимикробная xимиотерапия. - 2014. - T.16. - №4. - С.312-324. - URL: https://cyberleninka.ru/article/n/algoritm-mikrobiologicheskoy-diagnostiki-hronicheskoy-infektsii-lyogkih-u-bolnyh-mukovistsidozom
19. Curran B., Jonas D., Grundmann H., et al. Development of a multilocus sequence typing scheme for the opportunistic pathogen Pseudomonas aeruginosa. J Clin Microbiol. 2004;42(12):5644-5649. doi:10.1128/JCM.42.12.5644-5649.2004
20. The Main Site PubMLST at the Department of Biology, Oxford University, Great Britain Public databases for molecular typing and microbial genome diversity. – [Электронный ресурс] Режим доступа: http://www.pubmlst.org
21. Lee A. C., Jones A. L. Multi-resistant Pseudomonas aeruginosa ST235 in cystic fibrosis// Paediatric Respiratory Reviews– 2018. – V.27. –P. 18-20. doi: 10.1016/j.prrv.2018.05.009.
22. Treepong P., Kos V.N., Guyeux C., et al. Global emergence of the widespread Pseudomonas aeruginosa ST235 clone // Clin. Microbiol. Infect. – 2017. – V.24. – №3. – P. 258-266. https://doi.org/10.1016/j.cmi.2017.06.018.
23. Chichón G., López M., de Toro M., et al. Spread of Pseudomonas aeruginosa ST274 Clone in Different Niches: Resistome, Virulome, and Phylogenetic Relationship // Antibiotics. – 2023. – V.24. – №11. – P. 1561. https://doi.org/10.3390/antibiotics12111561
24. Ocampo-Sosa A.A., Fernandez-Martinez M., Cabot G., et al. Draft Genome Sequence of the Quorum-Sensing and Biofilm-Producing Pseudomonas aeruginosa Strain Pae221, Belonging to the Epidemic High-Risk Clone Sequence Type 274 // Genome Announc. – 2015. doi: 10.1128/genomeA.01343-14.
25. Nageeb W., Amin D.H., Mohammedsaleh Z.M., et al. Novel Molecular Markers Linked to Pseudomonas aeruginosa Epidemic High-Risk Clones. // Antibiotics. – 2021. – V.10. – №1. – P. 35. doi: 10.3390/antibiotics10010035
26. Ahmed M.A.S., Hadi H.A., Abu Jarir S., et al. Prevalence and microbiological and genetic characteristics of multidrug-resistant Pseudomonas aeruginosa over three years in Qatar // Antimicrob. Steward. Healthc. Epidemiol. – 2022;2:e96. doi: 10.1017/ash.2022.226
27. Cortes-Lara S., del Barrio-Tofino E., Lopez-Causape C., et al. Predicting Pseudomonas aeruginosa susceptibility phenotypes from whole genome sequence resistome analysis // Clin. Microbiol. Infect. – 2021. – V.27. – P. 1631–1637. doi: 10.1016/j.cmi.2021.05.011.
28. Bocharova Y.A., Savinova T.A., Lyamin A.V., et al. Genome features and antibiotic resistance of Pseudomonas aeruginosa strains isolated in patients with cystic fibrosis in the Russian Federation // Russ. Clin. Lab. Diagn. – 2021. – V.66. – P. 629–634. doi:10.51620/0869-2084-2021-66-10-629-634.
29. Van Mansfeld R., Willems R., Brimicombe R., et al. Pseudomonas aeruginosa genotype prevalence in Dutch cystic fibrosis patients and age dependency of colonization by various P. aeruginosa sequence types // J. Clin. Microbiol. – 2009. – V.47. – P. 4096–4101. doi: 10.1128/JCM.01462-09.
30. Mitchelmore P.J., Randall J., Bull M.J., et al. Molecular epidemiology of Pseudomonas aeruginosa in an unsegregated bronchiectasis cohort sharing hospital facilities with a cystic fibrosis cohort // Thorax. – 2017. – V.73. – P. 677–679. doi: 10.1136/thoraxjnl-2016-209889.
Review
For citations:
, , , , , , , , , , . Archives of Pediatrics and Pediatric Surgery. 2025;3(3).
JATS XML














